EA204对兔离体主动脉的影响

论文价格:0元/篇 论文用途:仅供参考 编辑:论文网 点击次数:0
论文字数:**** 论文编号:lw2023118917 日期:2025-10-24 来源:论文网

      作者:李娟 付守廷 李辉 陈国良 王锐 姚遥

【摘要】   摘要:目的 研究雌酚酮衍生物EA204对兔离体主动脉的作用及其作用机制。方法 兔主动脉环离体实验。结果 EA204(10-5~3×10-3mol/L)可以剂量依赖性地抑制氯化钡、氯化钾、去甲肾上腺素引起的兔离体主动脉环的收缩。兔离体主动脉环经亚甲基蓝或吲哚美辛预处理后,分别可使10-5~10-4或10-4~3×10-3mol/L EA204的舒张作用受抑制;经普萘洛尔预处理后,对EA204(10-5~3×10-3mol/L)的舒张作用无影响。结论 EA204舒张兔离体主动脉的作用与NO-cGMP途径及前列腺素合成酶途径有关。

【关键词】 雌酚酮 兔 主动脉 阻断剂

雌酚酮衍生物EA204于2005年由Cooperwood John S首次报道合成成功[1],合成者对其抗癌活性进行了初步考察,结果表明,该化合物有较弱的抗癌活性。本研究采用本室合成的EA204观察其对兔离体主动脉的作用,并对其作用机制进行了初步探讨。

  1 材料与方法

  1.1 材料

  1.1.1 实验动物 中国白兔,雌雄不限,体重(2.00±0.26)kg,由宁夏医科大学实验动物中心提供,健康状况符合国家普通实验动物健康标准。

  1.1.2 实验仪器 HSS-1(B)型恒温浴槽(成都仪器厂);RM6240B型多通道生理信号采集处理系统(成都仪器厂);JZJ01型肌肉张力换能器(成都仪器厂);医用供氧器(河北省冀州市福利医疗器械厂);电热恒温水浴锅(天津市泰斯特仪器有限公司)。

  1.1.3 药品 雌酚酮衍生物EA204(沈阳药科大学药物化学教研室提供,经核磁共振氢谱和碳谱测试确定结构);亚甲基蓝(沈阳市试剂三厂,批号041024);吲哚美辛口服乳液(辽宁省人民医院,批号20060428);盐酸肾上腺素注射液(上海禾丰制药有限公司,批号6A09025);重酒石酸去甲肾上腺素注射液(上海禾丰制药有限公司,批号5A11008);氯化钡(沈阳市兴东试剂厂产品,批号20020928);盐酸普萘洛尔(天津力生制药厂股份有限公司,批号:0611007)。

  1.2 方法

  1.2.1 兔离体主动脉环标本的制备[2] 用3%的戊巴比妥钠(30mg/kg)耳缘静脉注射将白兔麻醉后,迅速剥取兔胸主动脉条,制成宽3~5mm的环状标本,将标本置于盛有10mL营养液的浴管中,一端固定在通气钩上,另一端连接在张力换能器上,通过记录仪记录张力变化。浴管内保持温度(37±0.5)℃,并以每秒1~2个气泡的速度通入混合气体(95%O2+5%CO2)。标本初始负荷1g,每20min换一次营养液,平衡1h,待基线稳定后开始实验。

  1.2.2 EA204累积浓度舒张曲线的制备[3] 向浴管内加入致痉剂(氯化钡10-4 mol/L或氯化钾6×10-2 mol/L或去甲肾上腺素10-6 mol/L)诱导标本收缩,当达到最大收缩后,充分洗净标本,待标本恢复稳定后,再次用同浓度致痉剂诱导二次收缩,当与前一次收缩基本一致时,分别累积加入EA204(10-5~3×10-3 mol/L),建立EA204累积浓度舒张曲线。

  1.2.3 经阻断剂处理后的EA204累积浓度舒张曲线的制备[3] 向浴管中加入去甲肾上腺素10-6 mol/L或氯化钾6×10-2mol/L)诱导标本收缩,建立EA204累积浓度舒张曲线(参照1.2.2),作为对照;充分冲洗标本,标本恢复活性后,再次向浴管中加入同浓度去甲肾上腺素或氯化钾,标本达到稳定的收缩后,加入亚甲基蓝(10-5mol/L)或吲哚美辛(10-5mol/L)或普萘洛尔(10-6mol/L),共浴15min后重新建立EA204累积浓度舒张曲线。舒张百分数用EA204舒张的张力/去甲肾上腺素或氯化钾激发张力的比值表示。

  1.3 统计学方法 各组数据均以均值±标准差(±s)表示,采用t检验比较舒张百分数的差异有无统计学意义。

  2 结果

  2.1 EA204对兔离体主动脉环的舒张作用(表1)
  
  EA204(10-5~3×10-3mol/L)能不同程度地抑制氯化钡、氯化钾、去甲肾上腺素引起的兔离体主动脉环的收缩,其抑制效应呈浓度依赖性。

  表1 EA204对致痉剂收缩的离体兔主动脉环的舒张作用(略)

  2.2 阻断剂对EA204舒张血管效应的影响

  2.2.1 亚甲基蓝对EA204效应的影响(表2)
  
  标本经亚甲基蓝(10-5mol/L)预处理后,EA204(10-5~10-4mol/L)舒张去甲肾上腺素收缩的兔离体主动脉环的作用受抑制(P<0.05,P<0.01)。

  2.2.2 吲哚美辛对EA204效应的影响(表2)
  
  标本经吲哚美辛(10-5mol/L)预处理后,EA204(10-4~3×10-4mol/L)舒张去甲肾上腺素收缩的兔离体主动脉环的作用受抑制(P<0.01)。

  表2 去甲肾上腺素收缩的兔离体主动脉环经阻断剂处理后对EA204舒张作用的影响(略)

  与对照组比较*P<0.05,**P<0.01

  2.2.3 普萘洛尔对EA204效应的影响(表3)
  
  标本经普萘洛尔(10-6mol/L)预处理后,对EA204(1×10-5~3×10-3mol/L)舒张氯化钾收缩的兔离体主动脉环的作用无影响。

  表3 氯化钾收缩的兔离体主动脉环经阻断剂处理后对EA204舒张作用的影响(略)

  3 讨论
  
  雌激素对妇女正常心血管功能的维持和调节具有重要的意义,是天然的血管保护剂,其对心血管的保护作用包括影响脂蛋白代谢的间接作用及对血管壁的直接作用[4-6]。雌激素对血管壁具有舒张作用,有研究发现给雌性和雄性大鼠及家兔的股动脉、胸主动脉、肠系膜动脉、子宫动脉和门静脉急性应用17β-雌二醇均能抑制高钾所致的各类血管收缩和肌球蛋白轻链的磷酸化,产生快速舒血管效应[7]。本研究发现雌酚酮衍生物EA204对兔离体主动脉具有显著的舒张作用,其舒张效应呈浓度依赖性。
  
  氯化钡是内向整流型钾通道(KIR)阻滞剂,通过阻断KIR,引起细胞膜去极化,增加电压依赖性钙通道开放,使钙离子进入细胞内增加[8]。高钾液通过激活电位依赖性Ca2+通道(PDC),使细胞外Ca2+内流,引起血管收缩[9-11]。去甲肾上腺素通过激活受体操纵性Ca2+通道(ROC),除促进细胞外Ca2+通过ROC内流外,主要引起细胞内贮钙库中的Ca2+释放,两者都能使胞浆内游离Ca2+浓度升高,在钙调素调控下引起血管平滑肌收缩[12-13]。本实验结果表明EA204可以浓度依赖性地抑制氯化钡、氯化钾、去甲肾上腺素引起的兔离体主动脉环的收缩,因此我们推测EA204舒张血管作用与电位依赖性Ca2+通道、受体操纵性Ca2+通道及KIR有关。
  
  NO-cGMP系统信息通路是近年来研究较多的课题,NO的作用主要是通过激活可溶性鸟苷酸环化酶实现的,NO激活鸟苷酸环化酶,增加平滑肌细胞内的cGMP,激活cGMP依赖性蛋白激酶,使肌球蛋白轻链去磷酸化,而使血管平滑肌松弛[14]。亚甲基蓝是鸟苷酸环化酶抑制剂,加入亚甲基蓝孵育标本后,细胞内的鸟苷酸环化酶被抑制,cGMP生成减少,而使血管平滑肌收缩。实验结果表明,加入亚甲基蓝预处理标本后,EA204舒张兔离体主动脉环的作用被减弱,推测EA204可能通过NO-cGMP途径发挥其舒张血管作用。
  
  前列腺素通过激活腺苷酸环化酶,增加平滑肌细胞内的cAMP,产生舒血管效应[15]。花生四烯酸经环氧化酶作用生成前列腺素,吲哚美辛抑制环氧化酶的作用极强,因此可以减少前列腺素的生成,抑制血管平滑肌舒张。实验结果表明,加入吲哚美辛预处理标本后,EA204舒张兔离体主动脉环的作用被减弱,提示EA204可能通过前列腺素合成酶途径发挥其舒张血管作用。
  
  本实验观察到β受体阻断剂普萘洛尔对EA204舒张兔离体主动脉环的作用无影响,提示EA204舒张血管机制与β受体无关。
  
  本研究表明EA204具有舒张血管平滑肌的作用,其作用机制与NO-cGMP途径、前列腺素合成酶途径有关,与β受体无关。

参考文献


  [1] Cooperwood JS.Selective estrogen receptor modulators:USP,11073087[P].2005:3-5.

  [2] 马佳佳,马恒,王跃民,等.葛根素对大鼠腹主动脉的舒张作用及其机制[J].第四军医大学学报,2003,24(24):2231-2234.

  [3] Rika E,Yoshihiro T,Masahiro N,et al.Chronic treatment with 17β-estradiol increases susceptibility of smooth muscle cells to nitric oxide[J].Eur J Pharmacol,2005,520:142-149.

  [4] Walsh BW, Schiff I, Rosner B, et al. Effects of postmenopausal estrogen replacement on the concentrations and metabolism of plasma lipoproteins[J].N Engl J Med,1991,325:1196-1204.

  [5] Skafar DF,Xu R,Morales J,et al.Female sex hormones and cardiovascular disease in women[J].J Clin Endocrinol Metab,1997,82:3913-3918.

  [6] Shlipark MG,Simon JA,Vittinghoff E,et al.Estrogen and progestin,lipoprotein(a),and the risk of recurrent coronary heart disease event safe menopause[J].JAMA,2002,283(10):1845-1852.

  [7] Cruz MN,Douglas G,Gustafsson JA,et al.Dilatory responses to estrogenic compounds in small femoral arteries of male and female estrogen receptor-beta knockout mice[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2006,290(2):823-829.

  [8] Ferrer M,Marin J,Encabo A,et al.Role of K+ channels and sodium pump in the vasodilation induced by acetylcholine,nitric oxide,and cyclic GMP in the rabbit arota[J].General Pharmacol,1999,33(1):35-41.

  [9] Paoletti R,Govonis.Classification of calcium antagonists:proposal of the WHO Committee[J].Pharmacol Res Commun,1987,19(2):195-204.

  [10] Breeman CV,Mcnaughton E.The separation of cell membrane calcium transport form extracellular calcium exchange in vascular smooth muscle[J].Biochem Biophy Res Commun,1970,39(4):567.

  [11] Briggs AH.Calcium movements during potassium contraction in isolated rabbit aortic strips[J].Am J Physiol,1962,203(5):849-852.

  [12] Deth R,Casteels R.A study of releasable Ca2+ fractions in smooth muscle cells of the rabbit aorta[J].J Gen Physiol,1977,69(4):401-416.

  [13] Deth R,Breeman CV.Relative contributions of Ca2+ influx and cellular Ca2+ release during drug induced activation of the rabbit aorta[J].Pfluger Arch,1974,348(1):13.

  [14] Marin J,Rodriguez-Martinez MA.Role of vascular nitric oxide in physiological and pathological conditions[J].Pharmacol Ther,1997,75(2):111-134.

  [15] Shikano K,Ohistein EH,Berkowitz BA.Differential selectively of endothelium-derived relaxing factor and nitric oxide in smooth muscle[J].Br J Pharmacol,1987,92:483-485.

如果您有论文相关需求,可以通过下面的方式联系我们
客服微信:371975100
QQ 909091757 微信 371975100